产品内容
产品组成
|
规格(MI006-50 preps)
|
平衡液BL(Buffer BL)
|
30ml
|
溶液P1(Buffer P1)
|
15ml
|
溶液P2(Buffer P2)
|
15ml
|
溶液P3(Buffer P3)
|
20ml
|
去蛋白液PD(Buffer PD)
|
30ml
|
漂洗液PW( Buffer PW)
|
15ml
|
洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液EB)
|
15ml
|
RNsaeA (10mg/ml)
|
150μl
|
吸附柱CP3(Spin Columns CP3)
|
50个
|
收集管(2ml)(Collection Tubes 2ml)
|
50个
|
产品简介
本试剂盒采用碱裂解法裂解细胞,再通过离心吸附柱在高盐状态下特异性地结合溶液中的DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司新型材料,高效、专一吸附DNA。以下操作步骤适用于提取1-5 ml过夜培养的大肠杆菌,质粒提取得率和质量与宿主菌的种类和培养条件、细胞的裂解、质粒拷贝数、质粒的稳定性、抗生素等因素有关。使用本试剂盒提取的质粒DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、连接、转化、文库筛选、体外翻译、转染一些常规的传代细胞等
提取得率
质粒类型
|
菌液量
|
得率
|
质粒
|
低拷贝
|
1-5 ml
|
3-12 μg
|
pBR322, pACYC及其衍生载体pSC101及其衍生载体,SuperCos, pWE15
|
高拷贝
|
1-5 ml
|
6-30 μg
|
pTZ, pUC, pBS, pGM-T
|
1.溶液P1在使用前先加入RNase A(将试剂盒中提供的RNase A全部加入),混匀,置于2-8℃保存。注意事项(请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。)
2.使用前请先检查平衡液BL、溶液P2和P3是否出现浑浊,如有混浊现象,可在37℃水浴中加热几分钟,即可恢复澄清。
3.注意不要直接接触溶液P2和P3,使用后应立即盖紧盖子。
4.所有离心步骤均为使用常规台式离心机室温下进行离心,速度为12000 rpm(~13400×g)。
5.提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。
6.实验前使用平衡液BL处理吸附柱,可以充分激活硅基质膜,提高得率。
7.用平衡液BL处理过的柱子最好当天使用,放置时间过长会影响效果。
8.去蛋白液PD可以有效去除残留的蛋白污染,当宿主菌为endA+(TG1、BL21、HB101、ET12567、JM系列)等核酸酶含量较高的菌株时,强烈推荐使用去蛋白液PD。
操作步骤
使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇,加入60ml无水乙醇。
1.柱平衡步骤:向吸附柱CP3中(吸附柱放入收集管中)加入500μl的平衡液BL,12000 rpm(~13400×g)离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。(请使用当天处理过的柱子)
2.取1-5 ml过夜培养的菌液,加入离心管中,使用常规台式离心机,12000 rpm(~13400×g)离心1 min,尽量吸除上清(菌液较多时可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中)。3.向留有菌体沉淀的离心管中加入250μl溶液P1(请先检查是否已加入RNase A),使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌沉淀。注意:如果有未彻底混匀的菌块,会影响裂解,导致提取量和纯度偏低。
4向离心管中加入250μl溶液P2,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。注意:温和地混合,不要剧烈震荡,以免打断基因组DNA,造成提取的质粒中混有基因组DNA片断。此时菌液应变得清亮粘稠,所用时间不应超过5 min,以免质粒受到破坏。如果未变得清亮,可能由于菌体过多,裂解不彻底,应减少菌体量。
5.向离心管中加入350μl溶液P3,立即温和地上下翻转6-8次,充分混匀,此时将出现白色絮状沉淀。12000 rpm(~13400×g)离心10 min。注意:P3加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。
6.将上一步收集的上清液用移液器转移到吸附柱CP3中(吸附柱放入收集管中),注意尽量不要吸出沉淀。12000 rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP3放入收集管中。
7.可选步骤:向吸附柱CP3中加入500μl去蛋白液PD,12000 rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP3重新放回收集管中。如果宿主菌是end A+宿主菌(TG1,BL21,HB101,JM系列,ET12567等),这些宿主菌含有大量的核酸酶,易降解质粒DNA,推荐采用此步。如果宿主菌是endA宿主菌(DH5α,TOP10等),这步可省略。
8.向吸附柱CP3中加入600μl漂洗液PW(请先检查是否已加入无水乙醇),12000 rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CP3放入收集管中。
9.重复操作步骤8。
10.将吸附柱CP3放入收集管中,12,000 rpm(~13,400×g)离心2 min,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。注意:漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响,建议将吸附柱CP3开盖,置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
11.将吸附柱CP3置于一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位滴加50-100μl洗脱缓冲液EB,室温放置2 min,12000 rpm(~13400×g)离心2 min将质粒溶液收集到离心管中。
注意:洗脱缓冲液体积不应少于50μl,体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若后续做测序,需使用ddH2O做洗脱液,并保证其pH值在7.0-8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率。且DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。为了增加质粒的回收率,可将得到的溶液重新加入吸附柱中,室温放置2 min,12000 rpm(~13400×g)离心2 min,将质粒溶液收集到离心管中。低拷贝或大质粒(>10 kb)提取如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10 kb的大质粒,应加大菌体使用量,使用5-10 ml过夜培养物,同时按照比例增加P1、P2、P3的用量,洗脱缓冲液EB应在65-70℃水浴预热,在吸附和洗脱时可以适当的延长时间,以增加提取效率。其它步骤相同。
储存条件
该试剂盒置于室温(15-25℃)干燥条件下,可保存12个月,更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下,若溶液产生沉淀,使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间,必要时可在37℃水浴中预热10 min,以溶解沉淀。第一次使用前将RNase A加入溶液P1中,混匀后置于2-8℃保存,可稳定保存12个月以上。单独包装的RNase A在室温可稳定保存12个月以上。